數字PCR在環(huán)境水體研究中的應用
來(lái)源:本站 作者:zhangyang 時(shí)間:2025/2/26
在當今環(huán)境科學(xué)研究中,數字PCR(dPCR)作為一種高靈敏度、高特異性的分子檢測技術(shù),正逐漸成為監測水體污染的重要工具。隨著(zhù)全球水資源短缺和水污染問(wèn)題的日益嚴重,傳統的水質(zhì)檢測方法已難以滿(mǎn)足快速、準確的需求。數字PCR通過(guò)對目標DNA分子的精確計數,不僅能夠有效識別水體中的微生物和污染物,還能為生態(tài)保護和水資源管理提供科學(xué)依據。本文將探討數字PCR在環(huán)境水體研究中的應用前景及其帶來(lái)的變革。
一、數字PCR的原理
數字PCR(dPCR)是一種基于PCR(聚合酶鏈反應)技術(shù)的定量分析方法,其原理是將待擴增的DNA樣本分配到大量微小反應室中,每個(gè)反應室中可能含有零個(gè)或一個(gè)目標DNA分子。通過(guò)進(jìn)行PCR擴增,只有含有目標DNA的反應室會(huì )產(chǎn)生熒光信號。最終,通過(guò)統計陽(yáng)性反應室的數量,利用泊松分布公式,可以精確計算出樣本中目標DNA的絕對拷貝數。
這種方法具有高靈敏度和高特異性,能夠有效克服傳統PCR在定量分析中的局限性。
二、數字PCR與水體研究
1、水產(chǎn)養殖
微生物在有機物去除和氮循環(huán)中發(fā)揮著(zhù)關(guān)鍵作用,同時(shí)也可能產(chǎn)生有毒的硫化氫(H2S),如果它們對魚(yú)類(lèi)有致病性或具備益生菌特性,可能會(huì )直接影響?hù)~(yú)類(lèi)健康。目前水產(chǎn)養殖中用于監測某些細菌種類(lèi)的數量的方法通常精度、特異性、靈敏度較低,并且耗時(shí)較長(cháng)。
研究人員[1]用ddPCR分析了與鮭魚(yú)生產(chǎn)相關(guān)的3類(lèi)細菌,分別是魚(yú)類(lèi)病原體、可從海產(chǎn)品轉移到人身上的人類(lèi)病原體,以及破環(huán)飼養環(huán)境威脅魚(yú)類(lèi)健康的細菌。最后得出結論,數字PCR不僅能對極低含量的細菌gDNA進(jìn)行定量,而且在復雜樣品中依舊能保持如單個(gè)樣品一致的檢測精確性。
2、魚(yú)類(lèi)種群豐度
測量水樣中環(huán)境DNA (eDNA)濃度有可能是一種既經(jīng)濟高效又無(wú)損的估計魚(yú)類(lèi)種群豐度的方法。然而,水生系統中固有的非生物和生物條件的時(shí)空變異性被認為是確定魚(yú)類(lèi)eDNA濃度與魚(yú)類(lèi)種群豐度之間關(guān)系的主要障礙。
研究人員[2]將ddPCR方法獲得的魚(yú)類(lèi)eDNA (COI線(xiàn)粒體區域,134 bp)濃度與魚(yú)類(lèi)種群豐度(即個(gè)體數量)和生物量的高精度估計進(jìn)行了比較。結果顯示,在第三次采樣時(shí)間(ST3),刺魚(yú)eDNA濃度與個(gè)體豐度(即魚(yú)類(lèi)數量)和生物量之間發(fā)現了正相關(guān)關(guān)系(見(jiàn)圖2)。同樣,在第四次采樣時(shí)間(ST4),刺魚(yú)eDNA濃度和豐度及生物量之間也發(fā)現了正相關(guān)關(guān)系(見(jiàn)圖)。
結論:研究強調了基于ddPCR的eDNA是未來(lái)自然系統中魚(yú)類(lèi)種群豐度量化的一種有前途的方法。
對海洋中鯨、海豚和鼠海豚的物種、亞種或種群進(jìn)行基因取樣鑒定仍然具有挑戰性。大多數樣本都是通過(guò)某種形式的活組織檢查收集的,當個(gè)體在表面時(shí)需要近距離接近血管。另一群科研人員[3]采用數字PCR技術(shù),利用從海水中采集的環(huán)境DNA進(jìn)行鯨類(lèi)動(dòng)物的檢測和物種鑒定。結果證實(shí)了在鯨魚(yú)身后長(cháng)達2小時(shí)內檢測到eDNA的潛力。
海洋中采樣外置和數字PCR檢測結果
3、魚(yú)類(lèi)的定性與定量
(1)定性——真假鑒別
高價(jià)值銀鯧魚(yú)(Pampus argenteus)的摻假是世界范圍內一個(gè)嚴重的問(wèn)題,需要對該物種進(jìn)行準確的鑒定和定量。
研究人員[4]通過(guò)建立一種ddPCR方法,檢測銀鯧魚(yú)。結果表明ddPCR的絕對檢測限和定量限分別為 2 copies/μl和 21 copies/μl。對肉類(lèi)混合物的靈敏度為0.1%,對DNA混合物的靈敏度為0.5%。ddPCR的敏感性是real-time PCR的156倍。
本研究中建立的ddPCR方法可以成為解決物種摻假問(wèn)題的有價(jià)值的工具。
同樣,大西洋三文魚(yú)因其獨特的口感和豐富的營(yíng)養價(jià)值而受到全球消費者的青睞。然而,由于市場(chǎng)需求巨大,價(jià)格較高的大西洋三文魚(yú)常常被價(jià)格較低的虹鱒魚(yú)摻假或替代,這不僅損害了消費者的利益,也帶來(lái)了潛在的健康風(fēng)險。
傳統的檢測方法,如形態(tài)學(xué)特征識別、光譜和色譜技術(shù),雖然在一定程度上能夠識別魚(yú)類(lèi)品種,但存在特異性和靈敏度不足的問(wèn)題。而基于DNA的檢測方法,尤其是實(shí)時(shí)定量PCR(qPCR),雖然在定性和定量檢測中表現出色,但仍受限于擴增效率和DNA模板純度的影響。研究者[5]建立了一種基于液滴數字PCR (ddPCR)檢測的大西洋三文魚(yú)與虹鱒魚(yú)摻假的精確鑒別和定量方法。與實(shí)時(shí)定量PCR (qPCR)檢測相比,所建立的ddPCR方法具有更高的穩定性和準確性??傮w而言,基于ddpcr的定量方法具有較高的準確性、穩定性、靈敏度和實(shí)用性,適合用于鮭魚(yú)產(chǎn)品的常規監測和質(zhì)量保證。
(2)定量
鱈魚(yú)的需求量上升,品種鑒定和含量估算對食品的真實(shí)性和質(zhì)量評價(jià)具有重要意義。
研究者采用液滴數字PCR技術(shù),建立了阿拉斯加鱈魚(yú)在海產(chǎn)品中的含量測定方法。利用該方法,發(fā)現原始樣品質(zhì)量、DNA濃度和DNA拷貝數之間存在線(xiàn)性關(guān)系。還建立了一個(gè)公式來(lái)計算原始樣品的重量,基于DNA拷貝的數量。
本研究結果表明,所描述的ddPCR方法適用于海鮮產(chǎn)品中阿拉斯加鱈魚(yú)的定量,并具有應用于食品質(zhì)量認證的各種任務(wù)的潛力。
4、水中病原體-水質(zhì)監測
軍團菌引發(fā)的疾病在全球范圍內呈上升趨勢,這使得監測飲用水中的軍團菌成為公共衛生領(lǐng)域的一項重要任務(wù)。然而,現有的監測策略主要依賴(lài)于基于培養的方法,傳統的培養方法耗時(shí)長(cháng)、精度低,而基于PCR的方法雖然快速,但可能同時(shí)檢測到活細胞和死細胞的遺傳物質(zhì)。
研究者[6]使用了兩種常見(jiàn)的商業(yè)DNA提取試劑盒(方法A和方法B),對來(lái)自家庭淋浴器的水樣和生物膜樣品進(jìn)行了處理。
結果顯示,數字PCR技術(shù)(ddPCR)以其高靈敏度、精確度和無(wú)需標準曲線(xiàn)的優(yōu)勢,為病原菌的監測提供了新的解決方案。
相關(guān)文獻表明[7],dPCR越來(lái)越多地用于測定糞便指示菌、微生物源跟蹤標記基因和各種水生環(huán)境中的病原體。
優(yōu)化的dPCR分析方法可以定量微生物的遺傳物質(zhì),而不需要校準曲線(xiàn),并且通常具有比定量聚合酶鏈反應(qPCR)更好的分析性能(即更高的靈敏度、精度和可重復性)。
5、藻類(lèi)
奧得河發(fā)生一起由單細胞藻類(lèi)土棲藻引起的有害藻華事件,導致了大規模魚(yú)類(lèi)及其他生物的死亡。這種藻類(lèi)能產(chǎn)生名為prymnesins的毒素,對水生生物具有極高的毒性。研究團隊通過(guò)一系列先進(jìn)的分子生物學(xué)技術(shù),對這一生態(tài)災難進(jìn)行了深入分析。
研究人員[8]從奧得河的兩個(gè)監測站點(diǎn)收集了水樣,并利用ddPCR技術(shù)進(jìn)行了分析。結果顯示,樣本中檢測到的P. parvum ITS2拷貝數最高,達到了約1.14×109拷貝/升。這一結果與顯微鏡計數的細胞密度相吻合,證實(shí)了ddPCR技術(shù)在環(huán)境樣本中的有效性。
結論:本文建立的微滴數字PCR試驗將有助于未來(lái)監測奧得河或任何其他受鹽影響和微咸水體中低水平的細小瘧原蟲(chóng)。
參考文獻
[1] Netzer L D T .Absolute quantification of priority bacteria in aquaculture using digital PCR[J].Journal of Microbiological Methods, 2021, 183(1).
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[3] Baker, C. Scott, et al. "Environmental DNA (eDNA) from the wake of the whales: Droplet digital PCR for detection and species identification." Frontiers in Marine Science 5 (2018): 133.
[4] Cao, Weiwei, et al. "Species identification and quantification of silver pomfret using the droplet digital PCR assay." Food chemistry 302 (2020): 125331.
[5] Ma, X. Y., Shao, Z. L., Yu, X. P., & Wang, Z. L. (2023). A Droplet Digital PCR-Based Approach for Quantitative Analysis of the Adulteration of Atlantic Salmon with Rainbow Trout. Foods, 12(23), 4309.
[6] Cavallaro, Alessio, et al. "The impact of DNA extraction on the quantification of Legionella, with implications for ecological studies." Microbiology Spectrum 12.8 (2024): e00713-24.
[7] Tiwari, Ananda, et al. "Application of digital PCR for public health-related water quality monitoring." Science of the Total Environment 837 (2022): 155663.
[8] Mora, Demetrio, et al. "From genes to toxins: Profiling Prymnesium parvum during a riverine harmful algal bloom." Harmful Algae 136 (2024): 102644.
臻準數字芯片式PCR
1.微腔式(反應單元物理分割)
2.儀器系統多款選擇
3.產(chǎn)品優(yōu)勢
①10x的buffer,上樣量可以控制到2-17μL,對于低濃度和高濃度樣本都可以適用。
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